Les « Publication Highlights »: articles de recherche sur l’autophagie publiés par des laboratoires français et sélectionnés par le CFATG.

L’autophagie a été proposée comme un processus cellulaire qui contribue à la cancérogenèse pancréatique, en particulier au cours des premières étapes dans laquelle le rôle de l’oncogène KRAS est un élément clé. En effet, l’activation de la voie contrôlée par l’oncogène KRAS génère un fort stress métabolique, caractérisé par un déficit énergétique temporaire qui doit être compensée par une augmentation du métabolisme cellulaire par l’activation de l’autophagie. Bien que ce concept semble simple et claire, le rôle de l’autophagie comme pro- ou anti-tumorale dans le développement de l’adénocarcinome pancréatique est encore débattu, puisque plusieurs facteurs semblent conditionner ce processus, tels que les voies intracellulaires activées, le statut génétique des cellules pancréatiques transformées, ainsi que les contextes physiologiques et pathologiques dans lesquels l’autophagie est activée.
La pancréatite est une maladie inflammatoire du pancréas qui à la fois facilite et accélère la transformation des cellules pancréatiques lors de l’activation de l’oncogène KRAS. L’autophagie est fortement induite au cours de la pancréatite par la surexpression du gène VMP1. Nous avons récemment développé un modèle de souris transgénique dans laquelle la protéine VMP1 est induite simultanément avec l’activation de l’oncogène KrasG12D spécifiquement dans le pancréas, par l’ajout de la doxycycline dans l’eau de boisson. En utilisant ce modèle animal sophistiqué, nous pouvons affirmer que l’autophagie pancréatique, induite lors de la pancréatite par la surexpression de VMP1, favorise le développement des lésions précancéreuses lorsqu’elles sont induites par l’oncogène KRAS muté. En outre, le traitement de ces souris avec la chloroquine, un inhibiteur du flux autophagique, inverse les effets de VMP1 dans le cancer du pancréas. Dans l’ensemble, ces résultats soulèvent à la fois la pertinence mécaniste et biomédicale des voies qui sont essentielles pour initier la cancérogenèse pancréatique, en particulier si elle est associée à la pancréatite.
Cell Death Dis. 2016;7:e2295
Résumé Graphique-Haute résolution

(1) Sorbonne Universités, UPMC Univ Paris 06, INSERM, Centre d’Immunologie et des Maladies Infectieuses, U1135, CNRS 8255, Paris, France.
(2) CNRS, FRE3689, Université de Montpellier, Centre d’Études d’Agents Pathogènes et Biotechnologies pour la Santé, Montpellier, France.
(3) Unité de Génomique Virale et Vaccination, Institut Pasteur, Paris, France.
(4) Department of Dermatology and Wound Healing, Institute of Infection and Immunity, Cardiff University School of Medicine, Cardiff CF14 4XN, United Kingdom.
(5) Sorbonne Universités, UPMC Univ Paris 06, INSERM, Centre d’Immunologie et des Maladies Infectieuses, U1135, CNRS 8255, Paris, France; Département d’Immunologie, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris,Hôpital Pitié-Salpêtrière, Paris, France.
(6) Unité Virus et Immunité, Institut Pasteur, Paris, France.
(7) Sorbonne Universités, UPMC Univ Paris 06, INSERM, Centre d’Immunologie et des Maladies Infectieuses, U1135, CNRS 8255, Paris, France; Département d’Immunologie, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Hôpital Pitié-Salpêtrière, 75013 Paris, France.

La découverte récente d’anticorps neutralisant un large spectre d’isolats du VIH-1 a relancé la recherche sur le vaccin. Ces anticorps sont sécrétés par des cellules B ayant subis de nombreux cycles de maturation, un processus contrôlé par les lymphocytes T CD4+ auxiliaires. Ces cellules T CD4+ auxiliaires participent activement à la lutte contre l’infection en régulant la maturation des cellules B mais aussi l’expansion des réponses cytotoxiques et l’inhibition de la réplication du virus. Comprendre comment ces cellules T CD4+ sont activées est donc essentiel.
Dans ce travail, nous avons étudié la contribution de l’autophagie dans l’activation des cellules T CD4+ spécifiques du VIH-1. En effet, il a été montré que l »autophagie est requise pour la sélection thymique mais aussi la présentation des antigènes viraux aux cellules T CD4+. Il est couramment admis que les cellules T CD4+ reconnaissent des antigènes présentés, par les cellules dendritiques (DC), issus uniquement de la dégradation de protéines ou particules virales du milieu extérieur. Ici, nous dévoilons que les DC infectées présentent aux cellules T CD4+ des antigènes dérivés de protéines neo-synthétisées. Il s’agit d’une nouvelle voie qui permet de diversifier les sources d’antigènes pour l’activation des cellules T CD4+. Contrairement à ce que nous avions anticipé, dans les DC, l’autophagie ne contribue pas à cette voie de dégradation des antigènes. L’utilisation de mutants du virus, ne nous a pas permis de révéler de potentiels mécanismes d’échappement. Cependant, nous démontrons qu’un ciblage spécifique d’antigènes du VIH dans les autophagosomes, à l’aide d’une fusion avec LC3, augmente et diversifie les réponses des cellules T CD4+ spécifiques du VIH. En conclusion, différentes voies permettent l’activation des cellules T CD4+ antiviraux. Dans un contexte vaccinal, cibler les antigènes du VIH-1 dans les autophagosomes pourrait permettre d’induire des réponses T CD4+ antivirales efficaces.
J Immunol. 2016;197:517-32
Résumé Graphique-Haute résolution

Autres publications

• Increased fatty acid synthesis inhibits nitrogen starvation-induced autophagy in lipid droplet-deficient yeast. Biochem Biophys Res Commun. 2016 Aug 12;477(1):33-9.Régnacq M, Voisin P, Sere YY, Wan B, Soeroso VM, Bernard M, Camougrand N, Bernard FX, Barrault C, Bergès T.
• The Cannabinoid Receptor 2 Protects Against Alcoholic Liver Disease Via a Macrophage Autophagy-Dependent Pathway. Sci Rep. 2016 Jun 27;6:28806. Denaës T, Lodder J, Chobert MN, Ruiz I, Pawlotsky JM, Lotersztajn S, Teixeira-Clerc F.
• Caloric Restriction Mimetics Enhance Anticancer Immunosurveillance. Cancer Cell. 2016 Jul 11;30(1):147-60. Pietrocola F, Pol J, Vacchelli E, Rao S, Enot DP, Baracco EE, Levesque S, Castoldi F, Jacquelot N, Yamazaki T, Senovilla L, Marino G, Aranda F, Durand S, Sica V, Chery A, Lachkar S, Sigl V, Bloy N, Buque A, Falzoni S, Ryffel B, Apetoh L, Di Virgilio F, Madeo F, Maiuri MC, Zitvogel L, Levine B, Penninger JM, Kroemer G.
• Biomarkers of immunogenic stress in metastases from melanoma patients: Correlations with the immune infiltrate. Oncoimmunology. 2016 Mar 16;5(6):e1160193. Ladoire S, Senovilla L, Enot D, Ghiringhelli F, Poirier-Colame V, Chaba K, Erdag G, Schaefer JT, Deacon DH8, Zitvogel L, Slingluff CL Jr, Kroemer G.
• Positive impact of autophagy in human breast cancer cells on local immunosurveillance Oncoimmunology. 2016 May 24;5(6):e1174801. Ladoire S, Enot D, Senovilla L, Chaix M, Zitvogel L, Kroemer G.
• Anti-hepatitis C virus potency of a new autophagy inhibitor using human liver slices model. World J Hepatol. 2016 Jul 28;8(21):902-14. Lagaye S, Brun S, Gaston J, Shen H, Stranska R, Camus C, Dubray C, Rousseau G, Massault PP, Courcambeck J, Bassisi F, Halfon P, Pol S.
• Caspase-cleaved Tau-D(421) is colocalized with the immunophilin FKBP52 in the autophagy-endolysosomal system of Alzheimer’s disease neurons. Neurobiol Aging. 2016 Oct;46:124-37. Meduri G, Guillemeau K, Dounane O, Sazdovitch V, Duyckaerts C, Chambraud B, Baulieu EE, Giustiniani J.
• Autophagy-associated dengue vesicles promote viral transmission avoiding antibody neutralization. Sci Rep. 2016 Aug 25;6:32243. Wu YW, Mettling C, Wu SR, Yu CY, Perng GC, Lin YS, Lin YL.